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用微波消化鱼粉样品。0.5克样品,5ML硝酸,消化定容到25ML。该溶液直接上AAS测量,砷大概在15ug/l左右。吸取2ml溶液,加1ml抗坏血酸(5%)和硫脲(5%),用5%HCl定容至10ml,上AFS测量,结果只有0.5ug/l左右,差了大概有6倍左右。是不是没有还原完全?还原时间有2个小时左右。
主观题
用微波消化鱼粉样品。0.5克样品,5ML硝酸,消化定容到25ML。该溶液直接上AAS测量,砷大概在15ug/l左右。吸取2ml溶液,加1ml抗坏血酸(5%)和硫脲(5%),用5%HCl定容至10ml,上AFS测量,结果只有0.5ug/l左右,差了大概有6倍左右。是不是没有还原完全?还原时间有2个小时左右。
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主观题
用微波消化鱼粉样品。0.5克样品,5ML硝酸,消化定容到25ML。该溶液直接上AAS测量,砷大概在15ug/l左右。吸取2ml溶液,加1ml抗坏血酸(5%)和硫脲(5%),用5%HCl定容至10ml,上AFS测量,结果只有0.5ug/l左右,差了大概有6倍左右。是不是没有还原完全?还原时间有2个小时左右。
答案
主观题
用微波消化鱼粉样品。0.5克样品,5ML硝酸,消化定容到25ML。该溶液直接上AAS测量,砷大概在15ug/l左右。吸取2ml溶液,加1ml抗坏血酸(5%)和硫脲(5%),用5%HCl定容至10ml,上AFS测量,结果只有0.5ug/l左右,差了大概有6倍左右。是不是没有还原完全?还原时间有2个小时左右
答案
主观题
准确称取0.2g~0.5g生物干样于烧杯中,加入10mL硝酸,盖上表面皿,摇匀后放置过夜。次日将样品置于电热板,在160℃下加热消化至溶液近无色。再加入1mL高氯酸,加热消化至剩少许溶液,取下烧杯,冷却,用水定量转入50mL容量瓶中,加5mL硫脲+抗坏血酸,用1+9盐酸水定容至50mL,充分混匀,此为样品消化液。我的荧光值几乎没有,样品的荧光值只有10几!为什么?我的标准曲线用1+9盐酸水定容的,火焰很好的!
答案
判断题
用硝酸—硫酸消化法处理样品时,应先加硫酸后加硝酸。
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答案
判断题
用硝酸—硫酸消化法处理样品时,应先加硫酸后加硝酸()
答案
主观题
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答案
主观题
样品加5ML硝酸过夜,再加5ML过氧化氢消解,加的过氧化氢多起到什么作用呢
答案
主观题
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答案
主观题
在原子吸收分析法中,蒸馏水调零后,用3.00微克/毫升的锌标准溶液测得吸光度为0.357。测得样品的吸光度为0.284。 (1)计算样品中钙的浓度为多少? (2)若此试液由0.1088克固体样品消化定容成50.00mL而得,求该样品中锌的含量(mg/kg)。
答案
单选题
硫酸-硝酸消化食品样品过程中,要维持定量的硝酸是
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答案
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做汞样品:大米0.5克加4-6ML硝酸,2ML过氧化氢微波消解后,有高手说可以直接上机需要赶酸吗,还是直接定容上机测?重铬酸钾什么时候加最好?如要赶酸,如何赶又快又能使汞损失最少?
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BOD5样品的采集操作?
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微波消解后,加入5ML硫脲+抗坏血酸用水定容至25ml静置一段时间发现有大量气泡产生,打开瓶盖有棕色气体溢出,反应非常剧烈,液体底部有白色沉积物,指控样严重浓度偏低,什么原因?如何解决此现象?注:我又做了取2ml待彻夜,加5ml硫脲+抗坏血酸溶液定容至100ml,结果也有此现象。
微波消解后,加入5ML硫脲+抗坏血酸用水定容至25ml静置一段时间发现有大量气泡产生,打开瓶盖有棕色气体溢出,反应非常剧烈,液体底部有白色沉积物,指控样严重浓度偏低,什么原因?如何解决此现象?注:我又做了取2ml待彻夜,加5ml硫脲+抗坏血酸溶液定容至100ml,结果也有此现象
刚遇到的一个样品处理的现象,我的做法是:先称约0.7g的铁矿样品,消解完,定溶到100ml,然后移出10ml到50ml的容量瓶中,加10%含量的硫脲--抗坏血酸5ml,用1+9的盐酸定溶。问题在于:加完硫脲--抗坏血酸后,溶液变成黑色,并且不停的在冒气泡,我想这大概是因为我溶样时加了10ml硝酸的原因,不知大家遇到过这种现象没有?
刚遇到的一个样品处理的现象,我的做法是:先称约0.7g的铁矿样品,消解完,定溶到100ml,然后移出10ml到50ml的容量瓶中,加10%含量的硫脲--抗坏血酸5ml,用1+9的盐酸定溶。问题在于:加完硫脲--抗坏血酸后,溶液变成黑色,并且不停的在冒气泡,我想这大概是因为我溶样时加了10ml硝酸的原因,不知大家遇到过这种现象没有
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0.3g的植物中加5ml的硝酸,微波消解,赶酸后,我用1%的硫尿和1%的抗坏血酸的盐酸溶液定容时,溶液显红色,并产生大量气体,不知道是怎么一回事?
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